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纳米探针 | 设计对活性物质响应的菁基纳米平台用于小鼠比率NIR-II荧光成像

发布时间:2023-09-12 09:45

本文要点:高质量的近红外二区NIR-II)纳米探针可用于检测疾病、监测治疗过程和了解疾病发展,对实时生物成像和医学诊断具有重要意义。菁是构建可激活探针的一类重要荧光团,基于菁的NIR-II荧光团往往具有优异的光学性能、简单的合成方法和极高的吸收,然而其生物学应用却受到包括水溶液中呈弱荧光、稳定性差和特异性不足等缺点的阻碍。

本文采用分子工程开发了具有明亮、稳定发射和高特异性的基于菁的可激活NIR-II纳米平台。采用聚(苯乙烯-马来酸酐)(PSMA)封装NIR-II荧光分子IR1048,以获得稳定明亮的NIR-II纳米颗粒(PSMA@IR1048 NP)。通过电荷调制策略,将一系列菁荧光团负载在PSMA@IR1048 NP上,对活性物质表现出可调响应。结合两种策略,构建了NIR-II比率型荧光纳米探针RNP,包括RNP1RNP2RNP3;其中,RNP2表现出次氯酸(HClO)响应性能,并产生更高的NIR-II荧光比(FL2/FL1)信号。这种纳米探针能够可靠地报告糖尿病肝损伤和下肢缺血再灌注(I/R)损伤小鼠模型中的病理性HClO水平。为构建用于生物成像的稳定、明亮和特异的基于菁的NIR-II探针提供了策略。




作者首先将IR780IR1048作为纳米颗粒核心的备选分子,选用了一系列两亲性多聚物来封装IR780(图1a)和IR1048(图1e),以改善它们在H2O中的光学性质和对HClO的化学稳定性。其中,PSMA@IR780 NP在加入HClO780nm处的吸光度没有显著变化,显示出较好的稳定性(图1b, c),这可能归因于其相对较低的ζ电位(图1d),导致纳米颗粒和HClO间产生强烈的静电排斥。在多聚物结合IR1048所得的纳米颗粒中,DSPE-PEG@IR1048 NPPSMA@IR1048 NP的吸收光谱具有1048nm的特征峰,证实IR1048可以成功地结合到DSPE-PEGPSMA中,而其余纳米颗粒在1048nm处的吸光度可忽略不计(图1f)。调整IR1048 NPPSMADSPE-PEG的比例,发现随着PSMA的百分比从0%增加到100%,在H2O中其NIR-II荧光强度逐渐增加(图1g),对HClO的稳定性也不断增加(图1h),ζ电位逐渐降低(图1i)。这表明PSMA可以提高IR1048在水溶液中的荧光强度和化学稳定性。因此,选择PSMA@IR1048NP进行表征和后续成像实验。

PSMA@IR1048 NP可以很好地分散在水中,在透射电子显微镜下呈直径约30nm的球形(图1j)。在水中显示出明亮稳定的NIR-II荧光,强度高于H2OMeOH中的游离IR1048染料(图1k)。在与不同活性物质孵育后,其吸光度和荧光没有明显变化,表现出良好的稳定性(图1l, m)。


1.a)两亲性聚合物和IR780的化学结构。两亲性聚合物@IR780 NPs的一步自组装。游离染料IR780和用不同两亲性聚合物修饰的IR780在与HClO孵育之前(b)和之后(c)的吸收光谱。(d)用不同两亲性聚合物修饰的IR780的ζ电位。(e)两亲性聚合物@IR1048 NPs的一步自组装。(f)不同两亲性聚合物修饰的IR1048的吸收光谱。(g)不同PSMADSPE-PEG比例的两亲性聚合物@IR1048 NPs的荧光强度。插图:纳米颗粒相应的荧光图像。(h)不同PSMADSPE-PEG比例的两亲性聚合物@IR1048 NPs在与HClO孵育前后的1048nm处的吸光度。(i)用不同比例的PSMADSPE-PEG修饰的IR1048的ζ电位。(jPSMA@IR1048 NPsH2O中的透射电子显微镜(TEM)图像。(kIR1048H2OMeOH中和PSMA@IR1048 NPsH2O中的NIR-II1100-1700 nm)荧光对比。PSMA@IR1048 NPsPBS中与各种活性物质孵育后的的吸收(l)和荧光(m)光谱。1PBS21O250μmol/L);3Cys50μmol/L);4GSH50μmol/L);5H2O250μmol/L);6·O250μmol/L);7·OH50μmol/L);8ONOO20μmol/L);9HClO20μmol/L)。激发波长:980nm


接下来,将一系列菁基荧光团负载在PSMA@IR1048 NP上,构建比率型NIR-II探针RNP(图2a, e, i)。相较于游离菁基染料,RNP由于其在水溶液中的溶解度得到改善,表现出更明显的氰基荧光团特征吸收峰(780nm)和强荧光发射(820nm)(图2b, f, j)。RNP的化学稳定性与所负载的菁基染料的电荷有关。携带+1净电荷的IR780分子静电吸附增强,从而显著提高其化学稳定性,加入活性物质后吸光度和荧光几乎恒定。而IR775SIR796带有0−1的净电荷,静电吸附减弱,使它们更容易被活性物质破坏(图2c, g, k)。值得注意的是,RNP2在加入HClO后吸光度急剧下降,而对其他活性物质有较好的稳定性,这成为构建比率型荧光纳米探针的基础。此外,RNP的光稳定性也得到改善(图2dhl)。


2. NIR-II比率荧光纳米探针RNP1a)、RNP2e)、RNP3i)的构建。(bIR780RNP1H2O中的荧光光谱。(fIR775SRNP2H2O中的荧光光谱。(jIR796RNP3H2O中的荧光光谱。RNP1c)、RNP2g)、RNP3k)与各种活性物质孵育后的吸收光谱。RNP1d)、RNP2h)、RNP3l)在808nm激光(180s200mW/cm2)下的吸收光谱。


如图3aRNP2表面的IR775SHClO存在时显示出关闭”NIR-II荧光(FL1,激发波长808nm),同时核心中的IR1048HClO足够稳定,因此提供了稳定的NIR-II输出信号(FL2,激发波长980nm)。RNP2在水溶液中分散性良好,呈球形(~30nm)(图3b)。

接着调节HClO浓度验证RNP2HClO的响应特性。检测吸收光谱发现,随HClO浓度从0增加到20μmol/LRNP2在约780nm处的吸光度逐渐降低,而IR1048特征吸收峰的变化可忽略(图3c)。荧光光谱也显示,IR775S的特征峰(~820nm)随HClO的浓度增加不断降低,而IR1048峰无显著变化(图3e, f)。将FL2荧光图像除以FL1图像来进一步构造比率图像(FL2/FL1),发现RNP2FL2/FL1比率随HClO浓度的升高而逐渐增加(图3d, g)。相较于其他活性物质,在HClO存在时的FL2/FL1比例提高了约30倍,表明RNP2HClO具有优异的特异性(图3h, i)。


3.a)用于HClO比率荧光成像RNP2方案。(bRNP2的代表性TEM图像。(cRNP20–20μmol/L HClO孵育后的吸收光谱。(d)在与不同浓度的HClO孵育后,RNP2FL1(激发波长:808nm,发射波长:1100-1700nm)、FL2(激发波长:980nm,发射波长:1100-1700nm)和FL2/FL1的荧光图像。(eRNP2与不同浓度的HClO孵育后的荧光光谱。激发波长:740980nm。(fRNP2820nm处的荧光与(e)中的HClO浓度之间的线性关系。(g)在用(e)中不同浓度的HClO孵育后RNP2FL2/FL1的定量。(h)选择性反应:与不同活性物质孵育后,RNP2FL1FL2FL2/FL1的荧光图像。1PBS21O250μmol/L);3Cys50μmol/L);4GSH50μmol/L);5H2O250μmol/L);6·O250μmol/L);7·OH50μmol/L);8ONOO20μmol/L);9HClO20μmol/L)。激发波长:808980 nm,发射:1100–1700 nm。(i)与不同活性物质孵育后RNP2的归一化FL2/FL1比率。


糖尿病是一种以血糖水平升高为特征的代谢紊乱。在高血糖状态下,肝脏葡萄糖异常升高,其氧化磷酸化会导致ROS过度产生,而ROS在糖尿病的进展和发展中起到重要的作用。因此,实时检测HClO水平对于糖尿病的辅助诊断非常重要。受RNP2HClO具有良好选择性的启发,作者进一步使用RNP2对糖尿病小鼠的HClO水平进行实时成像。

注射生理盐水的小鼠为健康小鼠(第1组);腹膜内注射链脲佐菌素以获得糖尿病小鼠(2-4组);用二甲双胍治疗糖尿病小鼠,以缓解糖尿病期间的氧化应激(第5组)。(图4a)。可见第2-4组的小鼠体重逐渐下降(图4b),其中第4组的血糖水平显著升高(图4c)。荧光成像结果显示,第15组显示出强烈的FL1荧光,而第2-4FL1的荧光强度逐渐降低(图4d, e)。且从第1组到第4组,FL2/FL1的比率显著增加(图4f),表明随着糖尿病的持续进展,HClO水平升高。结合检测时间可知,基于RNP2的比率荧光成像能够比体重变化早至少1天检测出链脲佐菌素诱导的糖尿病,比血糖测定早至少6天检测出糖尿病。

作者还研究了糖尿病与肝损伤之间的关系,发现糖尿病过程导致血清丙氨酸氨基转移酶(ALT)和天冬氨酸转氨酶(AST)显著增强(图4g, h)。肝脏组织学分析结果也显示,与健康小鼠和治疗组相比,在不同进展的糖尿病小鼠中观察到炎性细胞浸润和空泡变性,并且晚期糖尿病小鼠的损伤比早期糖尿病小鼠更严重(图4i),证明肝损伤与糖尿病之间存在积极关系。


4.aRNP2用于糖尿病小鼠成像和给药程序的方案。(b)糖尿病小鼠在不同时间点的相对体重。(c1-4组小鼠的血糖浓度(ns:无显著差异,****P<0.0001ANOVA)。当平均血糖浓度被确定为大于11.1mmol/L时,认为小鼠中已经发生糖尿病。(d)静脉注射RNP2 10分钟后,1-5组小鼠的FL1FL2和比率FL2/FL1图像。FL1激发波长:808 nmFL2激发波长:980 nm。发射波长:1100-1700 nm。黄色曲线表示肝脏区域。(e, f)静脉注射RNP2 10分钟后,第1-5组小鼠的归一化FL1FL2FL2/FL1比率的量化。(g, h1-5组小鼠的ALTAST浓度。(i1-5组小鼠肝脏的代表性H&E染色切片。


下肢I/R损伤是骨科手术中常见的主要并发症,通常伴有过表达的ROS水平。及时测量升高的ROS水平对检测I/R损伤程度具有重要意义。因此将RNP2用于对I/R损伤模型中的实时HClO水平进行成像。

小鼠右大腿接受短缺血(30分钟)或长缺血(60分钟),假手术组(左大腿)作为对照组,然后均再灌注90分钟,并腹腔注射RNP2,然后进行NIR-II成像(图5a)。在注射RNP206090分钟,假手术组的下肢区域显示出FL1FL2强荧光,而缺血组显示出弱FL1荧光(图5b-d)。其中,长缺血组由于HClO量较高且损伤严重,比短缺血组表现出更低的FL1强度和更高的FL2/FL1比率。

此外,对这些小鼠的下肢切片进行了组织学分析(图5e)。与假手术组相比,在I/R损伤区域可观察到炎症细胞浸润,并且长缺血小鼠(60分钟)的损伤比短缺血小鼠(30分钟)的更严重,表明I/R过程对小鼠的严重损伤。

5.a)下肢I/R过程的代表性程序。(b)静脉注射RNP2 06090分钟后短缺血和长缺血小鼠的FL1FL2和比率FL2/FL1图像。发射波长:1100-1700 nm。黄色曲线表示假手术区域和I/R区域。(c, d)在注射RNP2 06090分钟后,短时间和长时间缺血小鼠的标准化FL2/FL1比率的量化(平均值±s.d.*P<0.05ANOVA)。(e)短时间和长时间缺血小鼠肌肉的代表性H&E染色切片。


总之,本研究开发了一种简易的分子工程策略来构建基于菁的NIR-II比率成像纳米平台,并且成功开发了一种电荷调制策略,以调节纳米颗粒对活性物质的反应性,赋予其特定的HClO响应性能。所制备的RNP2可以避免疾病部位其他活性物质的干扰,从而可靠地检测HClO的病理水平,显示了基于菁基的纳米探针在特定疾病的NIR-II荧光成像中的良好潜力,该策略可能为设计其他明亮稳定的NIR-II纳米探针及其生物应用提供见解。


参考文献

Ma, Y.; Liu, L.; Ye, Z.; Xu, L.; Li, Y.; Liu, S.; Song, G.; Zhang, X.-B., Engineering of cyanine-based nanoplatform with tunable response toward reactive species for ratiometric NIR-II fluorescent imaging in mice. Science Bulletin 2023.


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